Die antimikrobielle Empfindlichkeitsprüfung bestimmt die Wirksamkeit von antimikrobiellen Wirkstoffen gegen Mikroorganismen. Über die standardmäßige Agardiffusion und Bouillonverdünnung hinaus bieten fortgeschrittene Methoden mechanistische Informationen über Resistenzen und ermöglichen eine gezielte Therapie.

Automatisierte Systeme wie VITEK und BD Phoenix verwenden miniaturisierte Bouillon-Mikrodilution in Mehrwellplatten mit kolorimetrischer oder turbidimetrischer Detektion. Ergebnisse sind innerhalb von 4 bis 12 Stunden mit MHK-Werten für eine umfassende antimikrobielle Palette verfügbar. Diese Systeme integrieren Expertenregeln zur Detektion von Resistenzmechanismen.

Der Etest verwendet einen Kunststoffstreifen mit einem vordefinierten antimikrobiellen Gradienten. Er kombiniert die Bequemlichkeit der Agardiffusion mit der quantitativen MHK von Verdünnungsmethoden. Der Schnittpunkt der Hemmellipse mit dem Streifen zeigt die MHK an. Der Etest ist nützlich für anspruchsvolle Organismen und wenn individuelle MHK-Werte für bestimmte Medikamente benötigt werden.

Der Nachweis von Carbapenemasen ist für die Infektionskontrolle kritisch geworden. Die modifizierte Carbapenem-Inaktivierungsmethode detektiert Carbapenemase-Produktion in Enterobacteriaceae, Pseudomonas und Acinetobacter. Der Carba-NP-Test detektiert Carbapenem-Hydrolyse kolorimetrisch. Molekulare Tests einschließlich PCR und Microarray detektieren Carbapenemase-Gene wie KPC, NDM, VIM, IMP und OXA-Varianten.

Die Bestätigung von Extended-Spectrum-Beta-Lactamasen nutzt die synergistische Hemmung durch Clavulansäure. Kombinierte Scheibentests mit und ohne Inhibitor bestätigen die ESBL-Produktion. Der AmpC-Beta-Lactamase-Nachweis verwendet Borsäure- oder Cloxacillin-Hemmung.

Methicillin-Resistenz bei Staphylokokken wird durch Cefoxitin-Agardiffusion oder PBP2a-Latex-Agglutination nachgewiesen. Vancomycin-Resistenz bei Enterokokken wird durch vanA/vanB-PCR bestätigt. Phänotypen der Makrolid-Lincosamid-Streptogramin-Resistenz werden durch den D-Zonen-Test unterschieden.

Genotypische Methoden einschließlich der Gesamtgenomsequenzierung ermöglichen eine umfassende Resistenzgenprofilierung. Die Sequenzierung der nächsten Generation detektiert bekannte und neue Resistenzdeterminanten, Typisierungsmarker und Virulenzgene direkt aus klinischen Proben oder Isolaten.

Interpretationskriterien folgen den CLSI- oder EUCAST-Richtlinien. Die Wahl der Grenzwerte beeinflusst die klinische Kategorisierung. Epidemiologische Cut-off-Werte unterscheiden Wildtyp- von Nicht-Wildtyp-Populationen unabhängig vom klinischen Ergebnis.