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Enzymkinetik

May 9, 2026 · Updated: May 25, 2026

Unter Enzymkinetik versteht man die Untersuchung der Geschwindigkeiten, mit denen Enzyme biochemische Reaktionen katalysieren. Durch die Messung, wie sich die Reaktionsgeschwindigkeit mit der Substratkonzentration ändert, können Wissenschaftler Schlüsselparameter bestimmen, die die Aktivität und Effizienz eines Enzyms beschreiben.

Schlüsselkonzepte der Enzymkinetik

Reaktionsgeschwindigkeit

Die Geschwindigkeit einer enzymkatalysierten Reaktion wird als die pro Zeiteinheit gebildete Produktmenge gemessen. Die Anfangsgeschwindigkeit (V0) wird zu Beginn der Reaktion gemessen, wenn die Substratkonzentration viel höher ist als die Produktkonzentration.

Michaelis-Menten-Gleichung

Das Michaelis-Menten-Modell beschreibt den Zusammenhang zwischen Substratkonzentration [S] und Reaktionsgeschwindigkeit V:

V = Vmax × [S] / (Km + [S])

Vmax ist die maximale Geschwindigkeit, wenn das Enzym mit Substrat gesättigt ist. Km (die Michaelis-Konstante) ist die Substratkonzentration, bei der die Reaktionsgeschwindigkeit die Hälfte von Vmax beträgt. Es spiegelt die Affinität des Enzyms zu seinem Substrat wider: Ein niedriger Km bedeutet eine hohe Affinität.

Michaelis-Menten-Grundstück

Wenn die Geschwindigkeit gegen die Substratkonzentration aufgetragen wird, ist die resultierende Kurve eine Hyperbel. Bei niedrigen Substratkonzentrationen steigt die Geschwindigkeit linear an. Mit zunehmender Substratkonzentration nähert sich die Kurve asymptotisch Vmax an.

Lineweaver-Burk-Plot

Das Lineweaver-Burk-Diagramm linearisiert die Michaelis-Menten-Gleichung, indem es den Kehrwert beider Seiten bildet:

1/V = (Km/Vmax) × 1/[S] + 1/Vmax

Der x-Achsenabschnitt beträgt -1/Km und der y-Achsenabschnitt beträgt 1/Vmax. Dieses Diagramm eignet sich zur Bestimmung kinetischer Parameter und zur Identifizierung von Arten der Enzymhemmung.

Umsatzzahl (kcat)

Die Umsatzzahl kcat stellt die Anzahl der Substratmoleküle dar, die pro Enzymmolekül pro Sekunde in Produkt umgewandelt werden. Es wird berechnet als kcat = Vmax / [E]total. Das Verhältnis kcat/Km misst die katalytische Effizienz.

Praktisches Michaelis-Menten-Assay-Protokoll

Reinigen Sie das Enzym von Interesse bis zur Homogenität und bestimmen Sie seine Konzentration durch BCA-Assay. Bereiten Sie einen 10-fachen Substratvorrat im Testpuffer vor. Richten Sie in einer 96-Well-Platte 12 Substratkonzentrationen ein, die einen Bereich von 0,2× bis 10× des geschätzten Km abdecken – verwenden Sie serielle 2-fache Verdünnungen (z. B. 0,1, 0,2, 0,5, 1, 2, 5, 10, 20, 50, 100, 200, 500 µM). Fügen Sie 20 µL Substrat und 160 µL Testpuffer hinzu und starten Sie die Reaktion mit 20 µL Enzymlösung (Endkonzentration angepasst, um eine messbare Geschwindigkeit zu ergeben). Messen Sie die Produktbildung kontinuierlich 5–10 Minuten lang mit einem Spektrophotometer oder Fluorometer bei der entsprechenden Wellenlänge (z. B. NADH-Absorption bei 340 nm für Dehydrogenase-Reaktionen). Berechnen Sie die Anfangsgeschwindigkeit (V0) aus dem linearen Teil der Fortschrittskurve (typischerweise die ersten 1–3 Minuten) in Einheiten von µM Produkt/min. Zeichnen Sie V0 vs. [S] und passen Sie die Michaelis-Menten-Gleichung mithilfe der nichtlinearen Regression in GraphPad Prism oder einer ähnlichen Software an. Extrahieren Sie Vmax und Km aus der Anpassung. Berechnen Sie für ein Lineweaver-Burk-Diagramm 1/V0 und 1/[S] und zeichnen Sie dann 1/V0 auf der y-Achse vs. 1/[S] auf der x-Achse auf. Der x-Achsenabschnitt = −1/Km, der y-Achsenabschnitt = 1/Vmax. Wiederholen Sie zur Inhibitorcharakterisierung den Test mit 2–3 Inhibitorkonzentrationen. Die kompetitive Hemmung zeigt einen gemeinsamen y-Achsenabschnitt mit zunehmenden Steigungen (Km steigt, Vmax bleibt unverändert); Nichtkompetitive Hemmung zeigt einen gemeinsamen x-Achsenabschnitt mit abnehmendem y-Achsenabschnitt (Vmax nimmt ab, Km bleibt unverändert). Berechnen Sie Ki, indem Sie die Steigungen gegenüber der Inhibitorkonzentration erneut auftragen.

Reale Anwendung

Das Enzym Acetylcholinesterase (AChE) wird unter Verwendung von Acetylthiocholin als Substrat getestet, wobei DTNB (Ellman-Reagenz) das Thiocholinprodukt bei 412 nm nachweist. Km für die Reaktion beträgt 50 µM und Vmax beträgt 150 µmol/min/mg. Der Inhibitor Donepezil (ein Alzheimer-Medikament) zeigt eine kompetitive Hemmung mit einem Ki von 2 nM. Diese Charakterisierung bestätigt Donepezil als wirksamen, reversiblen AChE-Inhibitor und unterstützt sein klinisches Dosierungsschema.