Die Labordiagnostik von Parasiteninfektionen stützt sich auf eine Kombination von mikroskopischen, immunologischen und molekularen Methoden. Die Auswahl des geeigneten diagnostischen Ansatzes hängt vom vermuteten Parasiten, dem klinischen Bild und der geografischen Vorgeschichte des Patienten ab.
Die Stuhluntersuchung ist die primäre diagnostische Methode für Darmparasiten. Der direkte Nativpräparat von frischem Stuhl in Kochsalzlösung und Lugolscher Lösung ermöglicht den Nachweis beweglicher Trophozoiten und Zysten. Anreicherungstechniken erhöhen die Empfindlichkeit durch Abtrennung von Parasiten aus Fäkalien. Die Formalin-Ethylacetat-Sedimentationsmethode eignet sich sowohl für Protozoen-Zysten als auch für Helmintheneier. Die Zinksulfat-Flotation ist wirksam für Protozoen-Zysten, verzerrt jedoch Trematodeneier.
Permanent gefärbte Ausstriche mit Trichrom- oder Eisenhämatoxylin liefern detaillierte morphologische Merkmale für die Artbestimmung von Protozoen. Modifizierte Säurefest-Färbungen werden für Cryptosporidium, Cyclospora und Cystoisospora verwendet. Die Kato-Katz-Technik liefert quantitative Eizahlen für bodenübertragene Helminthen und Schistosomen. Die Zellophanbandmethode weist Enterobius vermicularis-Eier in der Perianalhaut nach.
Die Blutuntersuchung weist blutübertragene Parasiten nach. Dicke und dünne Blutausstriche, gefärbt mit Giemsa oder Field-Färbung, werden für Malaria, Babesiose und Trypanosomiasis verwendet. Der dicke Tropfen konzentriert Parasiten für den Nachweis, während der dünne Ausstrich die Artbestimmung ermöglicht. Die Quantifizierung der Parasitämie dient der Überwachung der Behandlung. Der Nachweis von Mikrofilarien erfolgt mit Giemsa-gefärbten dicken Blutausstrichen oder der Knott-Konzentration, wobei der Zeitpunkt auf der bekannten Periodizität basiert.
Die Gewebediagnostik erfordert Biopsieproben. Schistosoma-Eier werden in Gewebeschnitten identifiziert. Trichinella-Larven werden in Muskelbiopsien nachgewiesen. Leishmania-Amastigoten werden in Knochenmark-, Lymphknoten- oder Milzaspiraten, gefärbt mit Giemsa, identifiziert. Amöbenleberabszessflüssigkeit kann Trophozoiten am Abszessrand zeigen.
Antigennachweismethoden ermöglichen eine schnelle Diagnose vieler Parasiteninfektionen. ELISA und immunchromatographische Lateral-Flow-Tests weisen Giardia-, Cryptosporidium- und Entamoeba-Antigene im Stuhl nach. Malaria-RDTs weisen HRP2 und pLDH nach. Tests auf zirkulierendes kathodisches Antigen weisen eine aktive Schistosoma-Infektion nach.
Serologische Tests weisen Antikörper gegen Parasitenantigene nach und sind für Gewebeparasiten nützlich. ELISA, Immunfluoreszenz und Western Blot werden für Toxoplasma, Strongyloides, Filariose, Schistosomiasis und Zystizerkose eingesetzt. Die Serologie kann in Endemiegebieten nicht zwischen vergangener und aktueller Infektion unterscheiden.
Molekulare Methoden bieten die höchste Empfindlichkeit und Spezifität. Nested PCR, Echtzeit-PCR und Multiplex-Gastrointestinal-Panels weisen mehrere Parasiten gleichzeitig nach und unterscheiden sie. Gattungs- und artspezifische Primer zielen auf ribosomale RNA-Gene, repetitive Sequenzen oder mitochondriale Gene ab. Die quantitative PCR misst die Parasitenlast und überwacht das Behandlungsergebnis.
