O diagnóstico laboratorial de infecções parasitárias baseia-se em uma combinação de métodos microscópicos, imunológicos e moleculares. A seleção da abordagem diagnóstica apropriada depende do parasita suspeito, da apresentação clínica e do histórico geográfico do paciente.
O exame de fezes é o principal método diagnóstico para parasitas intestinais. A montagem úmida direta de fezes frescas em salina e iodo permite a detecção de trofozoítos e cistos móveis. Técnicas de concentração aumentam a sensibilidade ao separar parasitas de detritos fecais. O método de sedimentação formol-acetato de etila é adequado tanto para cistos de protozoários quanto para ovos de helmintos. A flutuação com sulfato de zinco é eficaz para cistos de protozoários, mas distorce ovos de trematódeos.
Esfregaços corados permanentes usando tricrômico ou hematoxilina férrica fornecem características morfológicas detalhadas para identificação de espécies de protozoários. Colorações de ácido-resistência modificada são usadas para Cryptosporidium, Cyclospora e Cystoisospora. A técnica de Kato-Katz fornece contagens quantitativas de ovos para helmintos transmitidos pelo solo e esquistossomos. O método da fita adesiva detecta ovos de Enterobius vermicularis na pele perianal.
O exame de sangue detecta parasitas transmitidos pelo sangue. Lâminas de sangue espesso e fino coradas com Giemsa ou Field são usadas para malária, babesiose e tripanossomíase. O filme espesso concentra parasitas para detecção, enquanto o filme fino permite a identificação de espécies. A quantificação da parasitemia orienta o monitoramento do tratamento. A detecção de microfilárias usa filmes espessos de sangue corados com Giemsa ou concentração de Knott, com tempo baseado na periodicidade conhecida.
O diagnóstico de tecidos requer amostras de biópsia. Ovos de Schistosoma são identificados em cortes de tecido. Larvas de Trichinella são detectadas em biópsias musculares. Amastigotas de Leishmania são identificados em aspirados de medula óssea, linfonodos ou baço corados com Giemsa. O fluido de abscesso hepático amebiano pode mostrar trofozoítos na margem do abscesso.
Métodos de detecção de antígenos fornecem diagnóstico rápido para muitas infecções parasitárias. ELISA e testes de fluxo lateral imunocromatográficos detectam antígenos de Giardia, Cryptosporidium e Entamoeba em fezes. Testes rápidos de malária detectam HRP2 e pLDH. Testes de antígeno circulante catódico detectam infecção ativa por Schistosoma.
Testes sorológicos detectam anticorpos contra antígenos parasitários e são úteis para parasitas de tecidos. ELISA, imunofluorescência e Western blot são usados para Toxoplasma, Strongyloides, filariose, esquistossomose e cisticercose. A sorologia não pode distinguir infecção passada de atual em áreas endêmicas.
Métodos moleculares oferecem a maior sensibilidade e especificidade. PCR aninhado, PCR em tempo real e painéis gastrointestinais multiplex detectam e diferenciam múltiplos parasitas simultaneamente. Iniciadores específicos para gênero e espécie visam genes de RNA ribossômico, sequências repetitivas ou genes mitocondriais. A PCR quantitativa mede a carga parasitária e monitora a resposta ao tratamento.
